PCR扩增过程中，每一轮循环均检测一次荧光信号的强度。随着反应循环次数的不断增加，所扩增的目的基因片段呈指数规律增长，反应中产生的荧光信号强度与PCR产物的数量呈正比。仪器实时检测和采集的荧光信号，随着时间和循环数的不断增加，产生一条反映实时荧光信号强度变化的曲线，称为扩增曲线。扩增曲线以循环数为横坐标，荧光强度为纵坐标。
PCR扩增过程中，每一轮循环均检测一次荧光信号的强度。随着反应循环次数的不断增加，所扩增的目的基因片段呈指数规律增长，反应中产生的荧光信号强度与PCR产物的数量呈正比。仪器实时检测和采集的荧光信号，随着时间和循环数的不断增加，产生一条反映实时荧光信号强度变化的曲线，称为扩增曲线。扩增曲线以循环数为横坐标，荧光强度为纵坐标。异常状态扩增曲线、扩增曲线抬升，与阈值线相交产生了CT值原因分析① 软件在进行基线自动扣除的时候出现错误，引起了扩增曲线抬升；② 选用的耗材、试剂或者操作的原因，导致背星空体育官方入口 星空体育官网景荧光信号有所波动，造成反应孔的自动基线扣除错误；③ 探针浓度过高，体系中有荧光物质污染，扩增效率低。解决方案① 采取手动调整基线的方法，重新定义基线即可正常（即将基线起点改为荧光信号稳定的循环数，基线终点设置成扩增曲线起峰的前一个循环数）；② 重新提取样本、重新配置试剂（可采用不同厂家试剂检测），注意人员操作；③ 稀释模板重新扩增。2、扩增曲线不平整，有向上或者向下的尖峰原因分析① 仪器不稳定导致的扩增曲线异常（也可能突然停电或者电压不稳）；② 尖峰向下，可能是卤素灯老化所致发射光源不稳定（指卤钨灯光源的激发器）；③ 尖峰向上，考虑仪器或者孔位问题，还要考虑反应体系是否存有气泡。解决方案① 检查仪器性能，检查实验室电压情况；② 定期仪器保养维修，避免配件老化问题出现；③ 检查问题孔位，排除孔位问题；④ 配制反应体系，分装避免产生大量气泡，模板加完，微孔板离心再扩增。3、扩增曲线末尾起跳原因分析① 阴性对照曲线末尾起跳，表示存在交叉污染；② 复检样本，排除非特异性扩增的可能性；③ 正常样本曲线末尾起跳，怀疑模板存在交叉污染；或者样本浓度低、加样量不准确导致扩增效率低；④ 所用的试剂设计不合理，或存在交叉污染，或操作环境中有气溶胶造成污染。解决方案① 检查阴性对照是否存在污染；② 复检样本，如果复检后曲线为阴性直线则说明之前的末尾起跳为非特异性扩增，如果复检后曲线与之前一样末尾起跳则表示该样本中待检病毒核酸的浓度偏低；③ 更换试剂，建议使用不同厂家试剂比对；④ 对操作环境进行处理或更换新的环境、加样器、枪头以及所有的引物、试剂等。4 、扩增曲线分布混乱原因分析荧光波长范围星空体育官方入口 星空体育官网存在重叠，影响PCR检测通路采集荧光信号。解决方案进行荧光补偿，再分析可正常。5、扩增曲线扩增不完整原因分析① 模板污染导致降解，或者样本浓度低、加样量不准确导致扩增效率低；② 模板浓度太高，或者存在抑制成分；③ 荧光染料浓度低，或者仪器问题荧光收集异常；④ Taq酶无活性或活性降低；⑤ 试剂配制没充分混匀，分装不均匀。解决方案① 重新提取样本，排除提取效率变低、加样量不足等因素；② 稀释模板，重新扩增；③ 检查试剂，更换新试剂，双试剂检测；④ 试剂配制充分混匀，分装准确；⑤ 检查仪器。6、扩增曲线压低原因分析① 模板浓度太高；② 试剂问题，限制PCR反应速率和性能。解决方案① 稀释模板，重新扩增；② 检查试剂，更换新试剂，双试剂检测。7、扩增曲线前边下降，后边正常原因分析PCR前期过程中，试剂和模板没有得到充分的混匀，导致信号的不稳定，反应几个循环之后，模板和反应液开始混匀，荧光信号就变得稳定。8、内参基因扩增曲线未起原因分析① 试剂配制没充分混匀，分装不均匀，有效成分低；② 模板提取失败，或者污染降解；③ 采样不准，没有样本。解决方案① 检查试剂，更换新试剂，双试剂检测；试剂配制充分混匀，分装准确；② 重新提取样本；③ 重新采样检测。9、标准曲线原因分析① 标准品加样误差，标准品出现降解；② 模板中存在抑制物；③ 试剂缺陷，引物或探针不佳，重新设计。解决方案① 充分混匀标准品；② 使用新的标准品；③ 检查耗材，更换试剂，避免环境存在抑制物。10、扩增曲线变形原因分析① PCR反应板封膜不严或质量不好，在PCR过程中受到水蒸气的影响；② 反应体系或模板存在抑制物。解决方案① PCR反应板封膜压实，选择配套耗材，有瑕疵的及时更换；② 重新提取，重新配制试剂再检测；③ 复检样本。11、扩增曲线不平，与基线相切原因分析① 10个循环左右开始有抬高趋势，一般前15个循环的荧光信号作为荧光本底信号，此时反应体系和模板处于不稳定状态；② 基线自动扣除的时候出现错误，引起了扩增曲线抬升；③ 反应体系不均一，干扰荧光信号采集。12、扩增曲线先抬高再降低原因分析严重的蒸发会呈现先上升后下降的曲线，轻微的蒸发会是一种缓慢的上升，这类异常曲线可检查检测后的反应管液面是否有下降的现象来证明。解决方案上机检测前检查96微孔板封膜完好，保证无缝隙后上机扩增。
培养细胞胰蛋白酶溶液的消化能力和溶液的pH、温度、胰酶浓度及溶液中是否含有Ca++,Mg+离子和血清等因素有关。通常情况下，pH8.0,温度37oC其作用能力最强。另外，钙、镁离子及血清均能大大降低其消化能力。每次进行传代消化前，一定要用无钙镁离子的PBS液或D-Hanks液反复冲洗细胞培养瓶，以便将含血清的培养基冲洗干净，这样可大大提高消化液的消化能力。
血清中沉淀物的出现有许多种原因，但最普遍的原因是由于血清中脂蛋白的变性所造成。而血纤维蛋白(形成凝血的蛋白之一)在血清解冻后也会存在于血清中，也是造成沉淀物的原因之一。但这些絮状沉淀物并不影响血清本身的质量。若欲去除这些絮状沉淀物，可以将血清分装至无菌离心管内，以400g稍微离心，上清液即可接着加入培养基内一起过滤。最好不使用过滤的方法去除这些絮状沉淀物，因为它可能会阻塞过滤膜。