* * * * * * * * * * * * * * * * rRNA丰度高，占总RNA的80%，研究表达丰度较高的基因时比较适合；rRNA转录调节受其它因素影响，如28s和18s rRNA在有细分裂期间表达量明显减少或停止表达，所以在研究与细胞周期相关的基因时就不适合以此为内参；另外，由于表达量较高，在研究丰度相对较低的基因时，有时就不太适用，比如Multiplex。当然也有rRNA的忠实拥护者，有人认为表达量高才时定量准确的关键，总之各有说法，但选择看家基因最关键的地方还是看该基因在你所研究的体系下是否稳定表达，可通过选择两个看家基因在不同的处理间相互比较，看两者比值是否恒定，如果一致，那么他们都可用作这个实验的看家基因。 * * * * * * * * * * * * 拷贝数的计算： 待测样本浓度（ng/ul）＝OD260×40×稀释倍数 样本分子量=碱基数×324 待测样本拷贝数（copies/ul）=待测样本浓度/样本分子量×6×1014 倍比梯度稀释方法： 1v原液(标准品i) +9v稀释缓冲液，得标准品ii 1v标准品ii+9v稀释缓冲液，得标准品iii 1v标准品iii +9v稀释缓冲液，得标准品iv 1v标准品iv +9v稀释缓冲液，得标准品v 质粒标准品稀释方法与拷贝数计算 方 法：从血液中提取病毒DNA，以TaqMan探针法进行荧光定量检测 试 剂：TIANGEN公司探针法试剂RealMasterMix（Probe）（目录号：FP203） 标准品：质粒标准品浓度为106、105 、104 、 103 ；2个重复；设阴性空白对照 实验步骤：提取HBV DNA； 设计特异引物； 设计TaqMan探针并标记探针； 荧光定量扩增； 结果分析：获取血液样品中HBV DNA的精确copy数。 绝对定量实验例——乙肝病人血液中HBV的绝对定量 Sample copies/ml Ct1 Ct2 Mean Ct STD 标准品 5×103 28.18 28.64 28.41 0.16 标准品 5×104 25.25 25.14 25.19 0.04 标准品 5×105 22.11 22.46 22.28 0.12 标准品 5×106 18.63 18.92 18.77 0.10 未知样品 ? 20.56 20.45 20.5 0.05 空白对照 None None 实验数据 绝对定量实验例——乙肝病人血液中HBV的绝对定量 扩增效率（E）计算 E=10-1/斜率 －1 =10-1/-3.17 －1 =2.03－1 ＝1.03 标准曲线制作：利用Mean Ct 作图可得到标准曲线 绝对定量实验例——乙肝病人血液中HBV的绝对定量 相关系数（R2）：大于0.98，越接近1，结果可信度越高。 扩增效率（E）：0.8-1.2, 越接近1，越理想。 未知样品拷贝数的计算 将Ct值带入线 QuantityUnknown=105.36 =229087 copies 绝对定量实验例——乙肝病人血液中HBV的绝对定量 X= 20.5-37.52 -3.1726 =5.36 相对定量解析方法 理论上目的基因表达量分析条件 Sample B Sample A 目的基因扩增效率相同 RNA提取效率相同 细胞起始数相同 实际目的基因表达量分析 相对定量的必要性 以上条件不可能同时得到满足，必须用内对照基因（管家基因）进行校正，进行相对表达量分析。 管家基因 维持细胞基本代谢活动所必须的基因, 如：GAPDH、Actin、18S rRNA等 筛选方法 根据文献提供 通过具体实验筛选 相对定量分析——管家基因筛选 0 1 2 3 4 5 6 Sample1 Sample2 Sample3 Sample4 实验组 实验值 β-Actin GAPDH β-2-microglobulin HPRT P P P O 双标准曲线 -△△Ct法 相对定量分析——两种常用的分析方法 通过标准曲线对对照样品、待测样品的目的基因及管家基因进行定量，然后根据计算公式求得相对值即为相对表达量。 相对值= 校正值= 目的基因定量结果 管家基因定量结果 待测样品的校正值 对照样品的校正值 相对定量分析——双标准曲线法 公式： 优点：分析简单，实验优化相对简单 缺点：对每一个基因，每一轮实验都必需做标准曲线 应用：基因表达调控研究中最常用与公认的两种相对定量方法之一 相对定量分析——双标准曲线法 检测样品 管家基因H 目的基因X 定量结果 定量结果 校正值 相对量 对照样品 6391.5 343.4 0.0537 1.000 待测样品1 8589.7 17.3 0.0020 0.037 待测样品2 7432.9 1946.1 0.2618 4.874 实验数据 公式： F = 2 － 相对定量分析——2 法 优点：无需作标准曲线 缺点：假定扩增效率为 100 %； 假定标准曲线及每次扩增之际间的效率都保持一致； 实验条件优化较为复杂 应用：基因表达调控研究中最常用与公认的两种相对定量方法之一 待测组目的基因平均Ct值 待测组管家基因 平均Ct值 对照组目的基因 平均Ct值 对照组管家基因 平均Ct值 － － － －△△Ct 实验数据： Sample 处理前 处理后 Jun(MeanCt) GAPDH(MeanCt) E 18 16 17 17.4 1.95 1.95 2 - △△Ct法：假设目的基因和参照基因扩增效率都接近100% △Ct（处理前）＝18－17＝1 △Ct（处理后）＝16－17.4=－1.4 △△Ct=△Ct（处理后）－△Ct（处理前）＝－1.4－1＝－2.4 比率（处理后/处理前）=2－△△Ct＝2－（－2.4） = 5.3 所以Jun基因在处理后表达水平比处理前高5.3倍 修正方法：如果我们知道目标基因和参照基因有相同的扩增效率，但扩增效率不等于2，那么2－△△Ct可以修正为：E－△△Ct，例如扩增效率为1.95，那么计算公式可修正为1.95－△△Ct 相对定量分析——2 -△△Ct法 内容概要 荧光定量PCR的原理 荧光定量PCR的标记方法 荧光定量PCR的解析方法 SYBR法实验流程及注意事项 TIANGEN公司荧光定量相关产品 SYBR法实验流程及注意事项 样品制备 模板准备 引物设计 反应条件优化 浓度确定 技能要求 环境要求 误差控制 数据分析 仪器介绍 RT 上机 反应体系优化 试剂选择 分析方法 样品制备 环境要求 模板准备 数据分析 RT 上机 浓度确定 SYBR法实验流程及注意事项 无RNase环境 使用无RNase耗材 专用RNase-free工具 高纯度，浓度均一的RNA 分光光度计检测 电泳检测 RT 反应体系优化 试剂选择 样品制备 模板准备 数据分析 上机 AMV M-MLV Quant Super 下游反应数确定反转录体积 选择应用引物 高效、全长的cDNA SYBR法实验流程及注意事项 模板准备 引物设计 浓度确定 环境要求 误差控制 RT 样品制备 数据分析 上机 核酸制备区 反应液制备区 制作标准曲线 设定浓度区间 评价引物 使用mix降低系统误差 设置重复（≥3次） 设置空白和阴性对照 均一的反应液和模板混合物 GC％：50－60％ Tm：50－65℃ 单个碱基重复＜4个 无二级结构 扩增长度：100－200bp 反应体系优化 上机 反应条件优化 RT 样品制备 模板准备 数据分析 反应体积＞5ul，推荐20－50ul Mg2＋调节，酶活调节 引物浓度优化，模板量优化 退火温度优化：梯度PCR 延伸时间：产物长度决定 扩增效率：90％－110％ 重复性：std＜0.2 标准曲线 SYBR法实验流程及注意事项 标准品 待测样本 阳性对照 阴性对照 技能要求 误差控制 仪器介绍 上机 试剂选择 RT 样品制备 模板准备 数据分析 自配 realmastermix RCHO-Lightcycler series ROTOGEN-RG series BIO-RAD Opticon series ABI-7series Bioer－Linegene series 分装控制 内参控制 机器校正控制 平滑曲线，重复性好，灵敏度高 SYBR法实验流程及注意事项 ?Rotor-gene6000 MiniOpticon Mx3005PTM LINE-GENE FQD-66A? ABI PRISM 7500 iQ5 Real-Time PCR Detection System 数据分析 仪器介绍 分析方法 上机 RT 样品制备 模板准备 相对定量：2－△△Ct法 绝对定量：标准曲线法 可靠，准确的数据 SYBR法实验流程及注意事项 内容概要 荧光定量PCR的原理 荧光定量PCR的标记方法 荧光定量PCR的解析方法 SYBR法实验流程及注意事项 TIANGEN公司荧光定量相关产品 TIANGEN公司荧光定量产品 SYBR Green法 探针法 FP203 RealMasterMix (Probe) 以DNA为模板 FP202 RealMasterMix （SYBR Green） 以RNA为模板 FP302 Quant qRT-PCR (SYBR Green) Kit FP303 Quant 一步法qRT PCR (SYBR Green） TIANGEN公司荧光定量产品优势 试剂盒中使用改良后的Hotmaster Taq Polymerase，具有高效率、高灵敏度、高特异性特点 多种不同的实验缓冲液，满足不同实验需求 高效的Quant系列逆转录酶，满足RT需求 独特的Mg2＋自动调节，随时保证为PCR提供最佳Mg2＋浓度 谢谢！ * * * * * * * 荧光定量PCR技术专题 内容概要 荧光定量PCR的原理 荧光定量PCR的标记方法 荧光定量PCR解析方法 SYBR法实验流程及注意事项 TIANGEN公司荧光定量产品选择指南 实时定量PCR技术： 利用荧光信号的变化实时检测PCR扩增反应中每一个循环扩增产物量的变化，通过Ct值和标准曲线的关系对起始模板进行定量分析 与常规 PCR技术比较： 对PCR扩增反应的终点产物进行定量和定性分析，无法对起始模板准确定量，无法对扩增反应实时检测 荧光定量PCR原理－－定义 扩增曲线 荧光阈值 Ct值 荧光定量PCR原理－－常用名词概念 Cycle（循环数） Rn（荧光强度） Baseline Log－liner phase Log－liner phase 荧光基团 荧光检测元件 荧光定量PCR原理－－扩增曲线 Cycle（循环数） Rn（荧光强度） Baseline Log－liner phase Log－liner phase 前15个循环信号作为荧光本底信号（baseline） 荧光域值的缺省设置是3～15个循环的荧光信号的标准偏差的10倍 手动设置：大于荧光背景值和阴性对照的荧光最高值；进入指数期的最初阶段 真正的信号:荧光信号超过域值 Threshold 荧光定量PCR原理－－荧光域值 Ct值的定义： PCR扩增过程中，扩增产物的荧光信号达到设定的阈值时所经过的扩增循环次数 Cycle（循环数） Rn（荧光强度） Ct value 荧光定量PCR原理－－Ct值 Cycle number Ck 104 Ck 102 Sample Log of DNA concentration 模板DNA量越多，荧光达到域值的循环数越少，即Ct值越小。 Log模板起始浓度与Ct值呈线性关系。 荧光定量PCR原理－－Ct值与模板起始量的关系 线性关系、扩增效率确认 检测灵敏度确认 No template control确认 PCR扩增效率（E）:0.8-1.2 35Cycles内可得到好的定量结果 如果采用SYBR检测方法，30Cycles内无非特异性产物扩增 35 Cycles内无引物二聚体产生 相关系数（r2）：大于0.98 荧光定量PCR反应性的确认 定性分析研究：杂合或纯合子鉴定，（SNPs）分析等 绝对定量研究：病毒和病原菌定量分析，基因拷贝数定量， GMO定量检测等 相对定量研究：mRNA表达量分析，siRNA效果确认，基因芯片结果验证，差异显示结果验证等 荧光定量PCR技术的应用 内容概要 荧光定量PCR的原理 荧光定量PCR的标记方法 荧光定量PCR的解析方法 SYBR法实验流程及注意事项 TIANGEN公司荧光定量产品选择指南 非特异性荧光标记 SYBR Green I 特异性荧光标记 TaqMan Probe 常用荧光标记方法 SYBR Green I染料法——原理 SYBR Green I是一种结合于所有dsDNA双螺旋小沟 区域的具有绿色激发波长的染料。 SYBR Green I 热 变 性 引物退火 延伸反应 SYBR Green I染料法——作用机理 问题点： SYBR Green I与双链DNA进行结合后散发荧光，因此如 果反应体系中有非特异性扩增或引物二聚体的产生，也将 同时被检测，从而可能导致检测结果不准确。 SYBR Green I染料法——问题点与关键点 关键点： 设计合适引物，防止非特异性扩增！ 将温度与荧光强度的变化求导 (-dI/dT) 原始图谱 对数图谱 SY星空体育登录入口 星空体育在线官网BR Green I染料法——星空体育登录入口 星空体育在线官网融解曲线 融解曲线分析，单一峰无非特异性荧光 定量准确 融解曲线分析，出现杂峰其他产物出现非特异性荧光，因此定量不准确 SYBR Green I染料法——融解曲线 对DNA模板没有选择性 适用于任何DNA 使用方便，不必设计复杂 探针 具有价格优势 优 点 容易与非特异性双链DNA结合，产生假阳性 但可以通过融解曲线的分析，优化反应条件 对引物特异性要求较高 不能进行多重定量 缺 点 SYBR Green I染料法——优缺点 Taqman探针法——原理 5′端标记有报告基团(Reporter, R) ，如FAM、VIC等 3′端标记有荧光淬灭基团 (Quencher, Q) 探针完整，R发射的荧光能量被Q基团吸收 ，无荧光， R与Q分开，发荧光 Taq酶有 5′→3′外切核酸酶活性，可水解探针 Taqman探针法——工作机理 热变性 引物和探针与模板退火 延伸反应 探针 报告基团 淬灭基团 探针 DNA聚合酶 引物 R R R R 1、引物、探针的设计： 探针Tm为68-70℃ ，30 bp, 5’不能有G，G可能会淬灭荧光素， 引物尽量靠近探针，扩增片段400 bp，引物Tm为59-60℃ 2、反应参数的确定： 一般为：94 ℃，10-20S 60℃，30-60S（Taq酶5′→3′外切核酸酶活性在60℃ 最高），也可通过温度梯度优化退火温度 3、优化引物和探针浓度：获得最小Ct值，最大信号/背景比值 引物浓度：50-900nM 探针浓度：50-250nM 4、其他与常规PCR相同 Taqman探针法——PCR体系的建立 3’淬灭基团 淬灭基团性质 建议使用的5’报告基团 TAMRA 荧光物质 FAM, HEX, TET, JOE等 Eclipse 非荧光物质 FAM, HEX, TET, JOE, TAMRA, ROX等 Taqman探针法——荧光标记物的选择 高度特异性 重复性好 可进行多重定量 优 点 只适合一个特定的目标 委托公司标记，价格较高 不易找到本底低的探针 缺 点 Taqman探针法——优缺点 不同定量方法的比较 方法 优点 缺点 适用范围 SYBR Green I 方法 适用性广 灵敏 方便 便宜 引物要求高 易出现非特异性带 不能进行多重定量 适合科研中对各种目的基因定量分析，基因表达量的研究，转基因重组动植物的研究 TaqMan 方法 特异性高 重复性好 多重定量 价格高 只适合特定目标 病原体检测，疾病耐药基因研究,药物疗效考核 遗传疾病的诊断 内容概要 荧光定量PCR原理 荧光定量PCR的标记方法 荧光定量PCR的解析方法 SYBR法实验流程及注意事项 TIANGEN公司荧光定量产品选择指南 绝对定量解析方法 Sample 25 绝对定量的定义 Log（起始浓度）与循环数呈线性关系，通过已知起始拷贝数的标准品 可作出标准曲线,即得到该扩增反应存在的线性关系 根据样品Ct值，就可以计算出样品中所含的模板量 质粒标准品的制备 PCR 目的基因克隆 质粒提取，OD值定量，将质粒梯度稀释作为标准品使用 目的基因 目的基因 目的基因 质粒 目的基因 基因组DNA
苏里格气田天然气处理厂含油污泥破乳剂筛选与优化-油气田环境保护.pdf
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