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UniversalBlueqPCRSYBRGreenMasterMix
发布:2025-02-14 04:55:15 浏览:

  Universal Blue qPCR SYBR Green Master Mix扩增的预溶液,具有高灵敏度和高特异性的特点,颜色为蓝色,具有加样示踪的作用。核心组分聚合酶采用抗体法热启动,可以有效抑制样品准备过程中引物退火导致的非特异性扩增。同时配方添加了提升

  本产品中含有特殊的ROX Passive Reference Dye,适用于所有qPCR仪器,无需在不同的仪器上调整ROX的浓度,只需在配制反应体系时加入引物和模板即可进行扩增。

  本品避免反复冻融。产品中含有荧光染料SYBR Green I,保存或配制反应体系时需避免强光照射。

  1.推荐使用本公司cDNA合成试剂盒(货号:11141ES),以有效去除RNA样品中残留的基因组。

  2.解冻后Master Mix可能出现絮状或白色沉淀,手握缓慢溶解并上下轻柔颠倒混匀至溶液澄清,不影响试剂性能。

  a)引物浓度:通常引物终浓度为0.2 M,也可以根据情况在0.1-1.0 M之间进行调整。

  b)模板浓度:如模板为未稀释cDNA原液,使用体积不应超过qPCR反应总体积的1/10。

  c)模板稀释:cDNA原液建议5-10倍稀释,最佳模板加入量以扩增得到的Ct值在20-30个循环为好。

  d)反应体系:推荐使用20 L或50 L,以保证目的基因扩增的有效性和重复性。

  e)体系配制:请于超净工作台内配制,并使用无核酸酶残留的枪头、反应管;推荐使用带滤芯的枪头。避免交叉污染和气溶胶污染。

  b)荧光信号采集(★):请勿忘记打开荧光信号采集,按照仪器使用说明书要求进行实验程序设置,几种常见仪器的时间设定如下:

  Ct值介于30-35之间时,需要提高模板浓度,或者增大反应体系的体积,以提高扩增效率,保证结果分析的准确性;

  熔解曲线单峰,表明反应特异性好可以进行定量结果分析;若熔解曲线出现双峰或者多峰,则不能进行定量分析。

  熔解曲线出现双峰,需要通过DNA琼脂糖凝胶电泳判断非目标峰是引物二聚体还是非特异性扩增。

  2.正向引物和反向引物的Tm值相差不宜超过2℃。引物Tm值60℃-65℃为佳。

  3.引物碱基分布要均匀,避免出现连续的4个相同碱基,GC含量控制在50%左右。3端最后一个碱基最好为G或C。

  5.引物特异性需要用NCBI BLAST程序进行核对。避免引物3端有2个碱基以上的非特异性互补。

  6.设计完成的引物需要进行扩增效率的检测,只有具备相同扩增效率的引物才可用于定量比较分析。

  A:常用 2 步法。需提高扩增特异性,可选用 2 步法或提高退火温度。在扩增效率低, ct 值过大的时候,可以改用 3 步法或延长延伸时间。

  A:有效性要满足三个条件:(1)标准曲线:扩增效率范围:90-110%,对应斜率为-3--3.5。R2>0.98。(扩增效率=10-1/斜率-1),当斜率=-星空体育登录入口 星空体育在线官网3.32 时,扩增效率=100%。(2)扩 增曲线:S型曲线,且Ct值在15-35之间,阴性对照Ct>35或无Ct值。(3)熔解曲线:为单一峰。

  Ct值大于15个循环是因为3-15个循环的荧光值标准差的10倍是荧光阈值,Ct值太小了会影响曲线。

  A:同样的扩增产物也会出现Tm 值有微小差异,一般差异在 1 度以内都可以接受。

  A:一般CT值与模板起始浓度呈负相关,浓度越高,CT 值越小。但也有很多特殊情况, 比如体系中存在抑制物或是模板不纯,这时候稀释模板反而能使CT值变低。

  A:(1)X 表示模板 DNA 量需要实验者在首次实验时进行摸索。首先对模板DNA 进行稀释(一般推荐 5-10 倍),然后模板量梯度上样,选择 CT 值落在 20-30 之间的最佳上样量。

  b)3-15 个循环的荧光值标准差的 10 倍是荧光阈值,Ct 值太小了会影响曲线。

  A:ROX 是一种参比染料,其作用是标准化荧光定量反应中的非PCR 震荡,校正加样误差或者是孔与孔之间的误差,提供一个稳定的基线。

  A: 试剂中含有稳定性成分,本身不参与任何反应,但在电泳胶上面会表现出弥散状,不建议跑完后再电泳。

  枪头加样不要把空气打进去,二档吸样,一档打样品;缓慢推出液体,不要吹打;沿着壁打入到孔内;

  另外配置完后,如果还有气泡,离心PCR管去除。如果是96孔板,移液完后轻轻敲96孔板。